煮沸的日文

• すなわち試料原液１０μｌと１ｍｌの滅菌超純水をセラムチューブに入れ，Ｄｒｙ　Ｔｈｅｒｍｏ　Ｕｉｎｔ　ＤＴＵ?１８（ＴＡＩＴＥＣ，埼玉）にて１００℃で１０分間ボイリングしたものをテンプレートとした。
  即，将１０μｌ的试料原液与１ｍｌ的灭菌超纯水加入到血浆试管中，用Ｄｒｙ　Ｔｈｅｒｍｏ　Ｕｉｎｔ　ＤＴＵ－１８（ＴＡＩＴＥＣ，埼玉）加热器加热至１００℃，煮沸１０ｍｉｎ后，将产物作为样品。
• １９９１年抗原賦活技術応用の論文を発表された以来、抗原性賦活術（パラフィン切片を沸騰した水溶液の中）迅速、広範的に常用のホルマリン固定やパラフィン組織切片での免疫組織化学染色に応用され、伝統の形態学を突破し、分子形態学への一歩進んだ。
  自从应用抗原修复技术的文章于１９９１年发表后，抗原修复技术（煮沸石蜡切片于水溶液中）迅速、广泛应用于常规甲醛固定、石蜡包埋组织切片的免疫组织化学染色，从而打开了从传统形态学迈向分子形态学的大门。
• 方法　ニラの煮沸エキスを老齢マウスの胃に３０ｄ投与し、フローサイトメトリーによりマウスＴリンパ細胞の亜群を測定し、放射性免疫法により血清インターロイキン―２（ＩＬ―２）含有量を測定し、ＥＬＩＳＡ法により血清中の免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）含有量測定した。
  方法以韭子水煎剂灌胃老年小鼠３０ｄ，应用流式细胞技术检测小鼠Ｔ淋巴细胞亚群、放射免疫方法检测血清白介素―２（ＩＬ―２）含量，ＥＬＩＳＡ方法检测血清中免疫球蛋白Ｇ（ＩｇＧ）的含量。
• 結果１５例臨床検査陽性血漿標本の中、フェノール／クロロホルム法の抽出効率は最高であり（Ｐ＜０．０５）、換算後抽出効率は１００％であり、煮沸法は９０％、アルカリ―ＳＤＳ法は６５％である；そのほか煮沸法とフェノール／クロロホルム法の再現性はアルカリ―ＳＤＳ法より良く、変動係数（ＣＶ）値それぞれは０．２６、０．３０和０．３９であった。
  结果１５例临床检测阳性血浆标本中，酚―氯仿法提取效率为最高（Ｐ＜０．０５），换算后其相对提取效率为１００％，而沉淀煮沸裂解法为９０％，碱裂解吸附法为６５％；此外，沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿法的重复性均好于碱裂解吸附法，变异系数（ＣＶ）值分别为０．２６、０．３０和０．３９．
• 結果１５例臨床検査陽性血漿標本の中、フェノール／クロロホルム法の抽出効率は最高であり（Ｐ＜０．０５）、換算後抽出効率は１００％であり、煮沸法は９０％、アルカリ―ＳＤＳ法は６５％である；そのほか煮沸法とフェノール／クロロホルム法の再現性はアルカリ―ＳＤＳ法より良く、変動係数（ＣＶ）値それぞれは０．２６、０．３０和０．３９であった。
  结果１５例临床检测阳性血浆标本中，酚―氯仿法提取效率为最高（Ｐ＜０．０５），换算后其相对提取效率为１００％，而沉淀煮沸裂解法为９０％，碱裂解吸附法为６５％；此外，沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿法的重复性均好于碱裂解吸附法，变异系数（ＣＶ）值分别为０．２６、０．３０和０．３９．
• 結果１５例臨床検査陽性血漿標本の中、フェノール／クロロホルム法の抽出効率は最高であり（Ｐ＜０．０５）、換算後抽出効率は１００％であり、煮沸法は９０％、アルカリ―ＳＤＳ法は６５％である；そのほか煮沸法とフェノール／クロロホルム法の再現性はアルカリ―ＳＤＳ法より良く、変動係数（ＣＶ）値それぞれは０．２６、０．３０和０．３９であった。
  结果１５例临床检测阳性血浆标本中，酚―氯仿法提取效率为最高（Ｐ＜０．０５），换算后其相对提取效率为１００％，而沉淀煮沸裂解法为９０％，碱裂解吸附法为６５％；此外，沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿法的重复性均好于碱裂解吸附法，变异系数（ＣＶ）值分别为０．２６、０．３０和０．３９．
• 結果１５例臨床検査陽性血漿標本の中、フェノール／クロロホルム法の抽出効率は最高であり（Ｐ＜０．０５）、換算後抽出効率は１００％であり、煮沸法は９０％、アルカリ―ＳＤＳ法は６５％である；そのほか煮沸法とフェノール／クロロホルム法の再現性はアルカリ―ＳＤＳ法より良く、変動係数（ＣＶ）値それぞれは０．２６、０．３０和０．３９であった。
  结果１５例临床检测阳性血浆标本中，酚―氯仿法提取效率为最高（Ｐ＜０．０５），换算后其相对提取效率为１００％，而沉淀煮沸裂解法为９０％，碱裂解吸附法为６５％；此外，沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿法的重复性均好于碱裂解吸附法，变异系数（ＣＶ）值分别为０．２６、０．３０和０．３９．
• 方法ＨＣＭＶ　ＡＤ１６９株ウイルス顆粒を含むウイルス培養物は、異なる濃度で１０個健康人のＨＣＭＶ―ＤＮＡ陰性血漿標本とそれぞれ混合した；その他１５個臨床移植患者ＨＣＭＶｐｐ６５抗原血症陽性血漿標本を用い、上述の２種類標本に対し，アルカリ―ＳＤＳ法、煮沸法とフェノール／クロロホルム抽出法でウイルス核酸テンプレートを抽出し、その後蛍光定量ＰＣＲにより、標本の定量分析を行う同時に評価も行った。
  方法　含ＨＣＭＶ　ＡＤ１６９株病毒颗粒的病毒培养物，以不同浓度分别与１０份健康人ＨＣＭＶ―ＤＮＡ阴性血浆标本混合；另取１５份临床移植患者ＨＣＭＶｐｐ６５抗原血症阳性血浆样本，上述２种标本分别用碱裂解吸附法、沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿抽提法提取病毒核酸模板，随后运用荧光定量聚合酶链反应对样本进行定量分析，并作评价．
• 方法ＨＣＭＶ　ＡＤ１６９株ウイルス顆粒を含むウイルス培養物は、異なる濃度で１０個健康人のＨＣＭＶ―ＤＮＡ陰性血漿標本とそれぞれ混合した；その他１５個臨床移植患者ＨＣＭＶｐｐ６５抗原血症陽性血漿標本を用い、上述の２種類標本に対し，アルカリ―ＳＤＳ法、煮沸法とフェノール／クロロホルム抽出法でウイルス核酸テンプレートを抽出し、その後蛍光定量ＰＣＲにより、標本の定量分析を行う同時に評価も行った。
  方法　含ＨＣＭＶ　ＡＤ１６９株病毒颗粒的病毒培养物，以不同浓度分别与１０份健康人ＨＣＭＶ―ＤＮＡ阴性血浆标本混合；另取１５份临床移植患者ＨＣＭＶｐｐ６５抗原血症阳性血浆样本，上述２种标本分别用碱裂解吸附法、沉淀煮沸裂解法和酚―氯仿抽提法提取病毒核酸模板，随后运用荧光定量聚合酶链反应对样本进行定量分析，并作评价．